Liposomal C-Complex
Мощная поддержка иммунитета, энергии и молодости клеток. Улучшает устойчивость к стрессам, помогает восстановлению и защищает сосуды от преждевременного старения. Идеален для активного ритма жизни и ежедневной заботы о здоровье.
Описание
БАД «Липосомальный С комплекс» — это сочетание витамина C в липосомальной форме, дигидрокверцетина и бетулина для комплексной поддержки иммунной системы и антиоксидантной защиты организма. Формула помогает укреплять барьеры слизистых, активирует естественный противовирусный ответ, снижает воспаление и препятствует размножению вирусов. Комплекс эффективен при повышенных вирусных нагрузках, подходит для профилактики ОРВИ, гриппа, коронавирусных инфекций, может использоваться при хронических воспалениях и иммунной уязвимости. Поддерживает здоровье соединительной ткани. Хорошо переносится, подходит как для сезонного применения, так и для длительных курсов.
Форма выпуска: капсулы массой 865 мг ± 10%.
Срок годности: 2 года с даты изготовления.
Условия хранения: хранить в сухом, недоступном для детей месте при температуре от +5 °C до +25 °C.
Производитель: ООО «Жива Продукт ПРО», 385141, Россия, Республика Адыгея, Тахтамукайский район, г. п. Яблоновское, пгт Яблоновский, улица Космическая, дом 55
состав
Витамин C (липосомальная форма)
Поддерживает иммунитет и защищает клетки от стресса. Помогает бороться с воспалением, укрепляет слизистые оболочки и кожный барьер, уменьшает уязвимость перед вирусами. Благодаря антиоксидантным свойствам помогает организму быстрее восстанавливаться после болезней и уменьшает риск осложнений. Повышает активность иммунных клеток и способствует нормальной работе защитных систем организма.
Дигидрокверцетин (DHQ)
Природный флавоноид с мощной защитной и противовоспалительной активностью. Работает как антиоксидант и помогает клеткам сопротивляться повреждениям. Поддерживает целостность мембран и слизистых оболочек, снижает вероятность проникновения вирусов. Регулирует иммунный ответ, снижая вероятность избыточных или аллергических реакций. Помогает организму справляться с воспалением без перегрузки иммунной системы.
Бетулин
Экстракт бересты с противовирусным и защитным действием. Укрепляет клеточные мембраны, снижает их восприимчивость к вирусам и мешает вирусам проникать внутрь. Поддерживает барьерные функции кожи и слизистых, помогает уменьшить воспаление и защищает ткани от повреждения. Может уменьшать активность вирусов на разных этапах их жизненного цикла — от попадания в организм до размножения.
Состав: липосомальный витамин С, экстракт бересты (бетулин), экстракт софоры японской (дигидрокверцитин), носитель — микрокристаллическая целлюлоза, желатиновая/целлюлозная капсула.
Биологически активное вещество
Содержание в 1 капсуле
% от АУП*
Липосомальная аскорбиновая кислота, мг
560
—
Элементарного витамина С 65%, мг
364
606,6
Фосфолипидов 2,5%, мг
14
0,2
Экстракт бересты, мг
80
—
Из них бетулин 93,8%, мг
75
187,5
Экстракт софоры японской, мг
20
–
Из них дигидрокверцитин 95%, мг
19
76
способ применения
Взрослым принимать по 1–2 капсулы в день до еды.
показания к применению
– Дефицит витамина С
– Профилактика и лечение инфекционных заболеваний
– Хронические неинфекционные заболевания
– Гемоваскулярные нарушения (например, при сахарном диабете 2 типа)
– Ожоги, медленное заживление переломов и ран
– Профилактика вирусных заболеваний (ОРВИ, грипп, COVID, герпесвирусы)
– Поддержка иммунной системы в период эпидемий и сезонного снижения сопротивляемости
– Часто болеющие дети и взрослые
– Люди с хроническим фоновым воспалением (в т.ч. метаболический синдром, ожирение, поствирусная астения)
– Пожилые и ослабленные пациенты для укрепления общей резистентности
– Восстановление после перенесённых инфекций
– Пациенты с иммунной дисрегуляцией, утомляемостью, дефицитом энергии, тревожным фоном.
Противопоказания: индивидуальная непереносимость компонентов, беременность и кормление грудью. Перед применением рекомендуется проконсультироваться с врачом.
отзывы
клинические исследования
1. Dietary nutrient intakes and skin-aging appearance among middle-aged American women Maeve C Cosgrove, Oscar H Franco, Stewart P Granger, Peter G Murray, Andrew E Mayes 10.1093/ajcn/86.4.1225.
2. Prediction of dietary iron absorption: an algorithm for calculating absorption and bioavailability of dietary iron L Hallberg, L Hulthén DOI: 10.1093/ajcn/71.5.1147.
3. Vitamin C Intake and the Risk of Gout in Men – A Prospective Study Hyon K Choi, Xiang Gao, Gary Curhan PMCID: PMC2767211 NIHMSID: NIHMS147237 PMID: 19273781.
4. Immune-enhancing role of vitamin C and zinc and effect on clinical conditions Eva S Wintergerst 1, Silvia Maggini, Dietrich H Hornig DOI: 10.1159/000090495.
5. Douglas RM, Hemilä H, Chalker E, Treacy B. Vitamin C for preventing and treating the common cold. Cochrane Database Syst Rev 2007;(3):CD000980. [PubMed abstract]
6. Carr AC, Frei B. Toward a new recommended dietary allowance for vitamin C based on antioxidant and health effects in humans. Am J Clin Nutr 1999;69:1086-107. [PubMed abstract]
7. Intravenous Vitamin C and Cancer: A Systematic Review Heidi Fritz, Gillian Flower, Laura Weeks, Kieran Cooley, Michael Callachan, Jessie McGowan, Becky Skidmore, Leesa Kirchner, Dugald Seely DOI: 10.1177/1534735414534463.
8. Myint PK, Luben RN, Welch AA, Bingham SA, Wareham NJ, Khaw KT. Plasma vitamin C concentrations predict risk of incident stroke over 10 y in 20 649 participants of the European Prospective Investigation into Cancer Norfolk prospective population study. Am J Clin Nutr 2008;87:64-9. [PubMed abstract]
9. Antioxidant vitamins and coronary heart disease risk: a pooled analysis of 9 cohorts Paul Knekt, John Ritz, Mark A Pereira, Eilis J O'Reilly, Katarina Augustsson, Gary E Fraser, Uri Goldbourt, Berit L Heitmann, Göran Hallmans, Simin Liu, PirjoPietinen, Donna Spiegelman, June Stevens, Jarmo Virtamo, Walter C Willett, Eric B Rimm, Alberto Ascherio DOI: 10.1093/ajcn/80.6.1508.
10. Vitamin C supplementation lowers serum low-density lipoprotein cholesterol and triglycerides: a meta-analysis of 13 randomized controlled trials Marc P McRae PMCID: PMC2682928 DOI: 10.1016/j.jcme.2008.01.002.
11. Intracellular Ascorbate Prevents Endothelial Barrier Permeabilization by Thrombin William H. Parker, Zhi-chao Qu, James M. May DOI: 10.1074/jbc.M115.662098.
12. Jacob RA, Sotoudeh G. Vitamin C function and status in chronic disease. Nutr ClinCare 2002;5:66-74. [PubMed abstract]
13. Yoshida M, Takashima Y, Inoue M, Iwasaki M, Otani T, Sasaki S; JPHC Study Group. Prospective study showing that dietary vitamin C reduced the risk of age-related cataracts in a middle-aged Japanese population. Eur J Nutr 2007;46:118-24. [PubMed abstract]
14. Jacob RA, Sotoudeh G. Vitamin C function and status in chronic disease. Nutr ClinCare 2002;5:66-74. [PubMed abstract]
15. Liposomal-encapsulated Ascorbic Acid: Influence on Vitamin C Bioavailability and Capacity to Protect Against Ischemia–Reperfusion Injury Janelle L Davis, Hunter L Paris, Joseph W Beals, Scott E Binns, Gregory R Giordano, Rebecca L Scalzo, Melani M Schweder, Emek Blair, Christopher Bell, PMID: 27375360.
16. Liposomes as Advanced Delivery Systems for Nutraceuticals Christopher W Shade, PMID: 27053934
17. Fulda S, Kroemer G (2009) Targeting mitochondrial apoptosis by betulinic acid in human cancers. Drug Discov Today 14:885–890. https://doi.org/10.1016/j.drudis.2009.05.015
18. Zhang X, Hu J, Chen Y (2016) Betulinic acid and the pharmacological effects of tumor suppression (review). Mol Med Rep 14:4489–4495. https://doi.org/10.3892/mmr.2016.5792
19. Gheorgheosu D, Duicu O, Dehelean C et al (2014) Betulinic acid as a potent and complex antitumor phytochemical: a minireview. Anticancer Agents Med Chem14:936–945. https://doi.org/10.2174/1871520614666140223192148Return to ref 2014 in article
20. Theo A, Masebe T, Suzuki Y et al (2009) Peltophorum africanum, a traditional South African medicinal plant, contains an anti HIV-1 constituent, betulinic acid. Tohoku J Exp Med 217:93–99. https://doi.org/10.1620/tjem.217.93
21. Ryu SY, Lee C-K, Lee CO et al (1992) Antiviral triterpenes from Prunella vulgaris. Arch Pharm Res 15:242–245. https://doi.org/10.1007/BF02974063
22. Павлова Н. И., Савинова О. В., Николаева С. Н. и др. (2003) «Противовирусная активность бетулина, бетулиновой и бетулоновой кислот против некоторых оболочечных и безоболочечных вирусов. Фитотерапия» 74:489–492.
23. Shin S-J, Park C-E, Baek N-I et al (2009) Betulinic and oleanolic acids isolated from Forsythia suspensa Vahl inhibit urease activity of Helicobacter pylori. Biotechnol Bioprocess Eng 14:140–145.
24. Viji V, Helen A, Luxmi VR (2011) Betulinic acid inhibits endotoxin-stimulated phosphorylation cascade and pro-inflammatory prostaglandin E2 production in human peripheral blood mononuclear cells. Br J Pharmacol 162:1291–1303. https://doi.org/10.1111/j.1476-5381.2010.01112.x
25. Muceniece R, Saleniece K, Rumaks J et al (2008) Betulin binds to gamma-aminobutyric acid receptors and exerts anticonvulsant action in mice. PharmacolBiochem Behav 90:712–716. https://doi.org/10.1016/j.pbb.2008.05.015
26. Шиков А. Н., Дьячук Г. И., Сергеев Д. В. и др. (2011) «Экстракт бересты как терапия хронического гепатита С — пилотное исследование». Eur J Integr Med 18:807–810. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2011.01.021
27. U. Raj, I. Aier, K.P. Varadwa Taxifolin: a wonder molecule in making multiple drug targets Ann. Pharmacol. Pharm., 2 (2017), pp. 1-2. Google Scholar
28. D. Treutter Significance of flavonoids in plant resistance: a review
Environ. Chem. Lett., 4 (2006), pp. 147-157. View at publisherCrossrefView in ScopusGoogle Scholar
29. A. Aires, E. Marrinhas, R. Carvalho, C. Dias, M.J. Saavedra Phytochemical composition and antibacterial activity of hydroalcoholic extracts of pterospartumtridentatum and Mentha pulegium against Staphylococcus aureus isolates BioMedRes. Int., 2016 (2016), pp. 1-11 View at publisher CrossrefGoogle Scholar
30. L. M. Weiss, Y. F. Ma, P. M. Takvorian, H. B. Tanowitz, M. Wittner Bradyzoitedevelopment in toxoplasma gondii and the HSP70 stress response Infect. Immun., 66 (1998), pp. 3295-3302. View at publisher CrossrefView in ScopusGoogleScholar
31. J. Kim, Y. Lee, H. J. An, J. D. Lee, Y. Yi Anti-inflammatory activities of taxifolin from Opuntia humifusa in lipopolysaccharide stimulated RAW 264.7 murine macrophages J. Appl. Biol. Chem., 58 (2015), pp. 241-246. Google Scholar
32. S. A. El-Toumy, J. Y. Salib, W. A. El-Kashak, C. Marty, G. Bedoux, N. Bourgougnon Antiviral effect of polyphenol rich plant extracts on herpes simplex virus type 1.
Food Sci. Hum. Wellness., 7 (2018), pp. 91-10. View PDFView articleCrossrefView in ScopusGoogle Scholar
33. E. Biziagos, J. M. Crance, J. Passagot, R. Deloince Effect of antiviral substances on hepatitis A virus replication in vitro J. Med. Virol., 22 (1987), pp. 57-66. CrossrefView in ScopusGoogle Scholar
34. A. Vaidya, S. Jain, S. Sahu, P. K. Jain, K. Pathak, D. Pathak, R. Kumar, S. K. Jain Anticancer agents based on vulnerable components in a signalling pathway Min. Rev. Med. Chem., 20 (2020), pp. 886-907. View at publisherCrossrefView in ScopusGoogle Scholar
35. C. Tonelli, I. I. C. Chio, D. A. Tuveson Transcriptional regulation by Nrf2 Antioxid. Redox. Signal., 29 (2018), pp. 1727-1745. View at publisherCrossrefView in ScopusGoogle Scholar
36. M. Tanaka, S. Saito, T. Inoue, N. S. Asahara, M. Ihara Novel therapeutic potentials of taxifolin for amyloid associated neurodegenerative diseases and other diseases: recent advances and future perspectives Int. J. Mol. Sci., 20 (2019), pp. 1-13. Google Scholar
37. A.C. Akinmoladun, C. O. Oladejo, S. S. Josiah, C. D. Famusiwa, O. B. Ojo, M. T. Olaleye Catechin, quercetin and taxifolin improve redox and biochemical imbalances in rotenone-induced hepatocellular dysfunction: relevance for therapy in pesticide-induced liver toxicity? Pathophysiology, 25 (2018), pp. 365-371. View PDFViewarticleView in ScopusGoogle Scholar
38. J. Chen, X. Sun, T. Xia, Q. Mao, L. Zhong Pretreatment with dihydroquercetin, a dietary flavonoid, protected against concanavalin A-induced immunological hepatic injury in mice and TNF-α/ActD-induced apoptosis in HepG2 cells Food Funct, 9 (2018), pp. 2341-2352. View at publisherCrossrefView in ScopusGoogleScholar
39. T. V. Arutyunyan, A. F. Korystova, L. N. Kublik, M. K. Levitman, V. V. Shaposhnikova, Y. N. Korystov Effects of taxifolin on the activity of angiotensin-converting enzyme and reactive oxygen and nitrogen species in the aorta of aging rats and rats treated with the nitric oxide synthase inhibitor and dexamethasone Age, 35 (2013), pp. 2089-2097 Dordr. CrossrefView in ScopusGoogle Scholar
40. C. Cai, C. Liu, L. Zhao, H. Liu, W. Li, H. Guan, L. Zhao Effects of taxifolin on osteoclastogenesis in vitro and in vivo Front. Pharmacol., S9 (2018), pp. 1-10. Google Scholar
41. H. Q. Zhang, Y. J. Wang, G. T. Yang, Q. L. Gao, M. X. Tang Taxifolin inhibits receptor activator of NF-κB ligand-induced osteoclastogenesis of human bone marrow-Derived macrophages in vitro and prevents lipopolysaccharide-induced bone loss in vivo Pharmacology, 103 (2019), pp. 101-109. View in ScopusGoogle Scholar
42. Vitamin C Intake and the Risk of Gout in Men – A Prospective Study Hyon K Choi, Xiang Gao, Gary Curhan. PMID: 19273781.
Отправить отзыв
Для отправки комментария вам необходимо авторизоваться.